色譜柱填料孔徑大小對(duì)樣品檢測(cè)影響
選擇什么樣填料孔徑的柱子是根據(jù)分子量的大小來(lái)確定的。填料孔徑對(duì)分離度的影響,120?的色譜柱通常適用的范圍為分子量<2000的,如果分子量太大,在填料為120?孔徑的柱子上分離度會(huì)比較差,因?yàn)闃悠贩肿釉谏V柱上有較好的保留是由于可以進(jìn)入到填料的微孔里面,與鍵合在表面上的C18長(zhǎng)鏈相互作用,通??讖街睆叫枰笥诜肿又睆降?倍以上才不會(huì)對(duì)分析造成影響。因此一般化藥分子量不超過(guò)2000,生物藥不超過(guò)5000,用120?,化藥2000以上,生物藥5000以上,則用300?。
不同緩沖鹽試用完后對(duì)色譜柱維護(hù)通用方法
流動(dòng)相中含有緩沖鹽時(shí),大的原則是:使用前要過(guò)渡,使用后要清洗(清洗包括兩個(gè)步驟,一個(gè)步驟是用來(lái)清洗緩沖鹽,另一個(gè)步驟是用來(lái)清洗強(qiáng)保留物質(zhì)的),具體請(qǐng)按如下方式保養(yǎng)色譜柱。
用乙腈:水=10:90(如果是甲醇體系則用甲醇:水=10:90)以1mL/min流速過(guò)渡30min,約7個(gè)柱體積(目的是防止緩沖鹽在進(jìn)入柱子時(shí)析出)。
步驟1)用乙腈:水=10:90(或甲醇:水=10:90)以1mL/min流速反向沖洗 45min,約10個(gè)柱體積(目的是洗去緩沖鹽,防止緩沖鹽在色譜柱內(nèi)存留引起使用壽命下降);
步驟2)再用乙腈:水=80:10(或甲醇:水=80:10)1mL/min流速反向沖洗45min,約10個(gè)柱體積(目的是洗去分析過(guò)程中積累的強(qiáng)保留物質(zhì),防止強(qiáng)保留物質(zhì)在色譜柱內(nèi)進(jìn)一步積累,影響以后的分析,也防止強(qiáng)保留物質(zhì)的積累導(dǎo)致的柱壓升高),然后色譜柱保存在乙腈:水=80:10(或甲醇:水=80:10)中。
注意:
1)乙腈:水=10:90 或甲醇:水=10:90容易長(zhǎng)菌,溫度越高越容易長(zhǎng)菌,實(shí)驗(yàn)表明,在28度條件下保存至第5天時(shí)發(fā)現(xiàn)長(zhǎng)菌,不宜多配。
2)Welch公司的大部分色譜柱都能反向沖洗或使用(色譜柱說(shuō)明書(shū)上會(huì)有寫明哪些色譜柱能反沖,若沒(méi)寫,則不能反沖),如果您使用的色譜柱不能反向沖洗或使用,則無(wú)需反沖,本方法也適用,只是反沖的效果相對(duì)較好。
氨基柱正相使用與反相使用區(qū)別以及色譜柱保存:
推薦先用正己烷-異丙醇(99:1)以 0.5mL/min的流速?zèng)_10倍柱體積,再根據(jù)流動(dòng)相選用極性相近的流動(dòng)相,相同流速?zèng)_10倍柱體積,最后換成流動(dòng)相。正相使用時(shí),不宜分析含醛基、羰基的化合物,不可用于還原糖的分析;流動(dòng)相要*脫氣,并不得含有羰基化合物和過(guò)氧化物(質(zhì)量不好的乙mi、四氫呋喃含有少量)。
先用異丙醇以0.5mL/min的流速?zèng)_30倍柱體積,再依次以相同的流速相同的用量用乙腈沖柱子,在過(guò)渡到流動(dòng)相體系。再換成流動(dòng)相。反相條件下使用時(shí),要特別注意控制pH值范圍,pH值越低越有發(fā)生水解的危險(xiǎn),流動(dòng)相中水的比例越高當(dāng)然也越有發(fā)生水解的危險(xiǎn)。最li想的pH范圍在pH2.5~8范圍,建議水相<40%以下使用。
正相條件下,可以直接采用流動(dòng)相平衡系統(tǒng),使用后用異丙醇以0.5mL/min流速反向沖洗60min,最后保存在異丙醇中,正向使用。
反相條件下使用,先用異丙醇以0.5mL/min流速過(guò)渡60min,再用甲醇或乙腈沖洗色譜柱30min以過(guò)渡到反相模式。然后再更換成流動(dòng)相進(jìn)行平衡如果流動(dòng)相中有緩沖鹽,使用前用采用流動(dòng)相同等比例的有機(jī)相和水相進(jìn)行過(guò)渡,但水相中不含緩沖鹽。過(guò)渡30min后再換成流動(dòng)相進(jìn)行平衡色譜柱。
乳糖檢測(cè)使用氨基柱基線波動(dòng)大操作流程
1)新柱活化:用異丙醇0.5mL/min流速?zèng)_洗4個(gè)小時(shí),再純乙腈、70%乙腈水各1mL/min流速各1小時(shí),然后用流動(dòng)相沖洗至基線平穩(wěn)進(jìn)樣。
2)流動(dòng)相配置:建議兩項(xiàng)流動(dòng)相預(yù)混合,并且流動(dòng)相混合前分別采用水膜和有機(jī)相膜過(guò)濾水相和有機(jī)相,然后按照比例配制混合500mL的流動(dòng)相于同一溶劑瓶中,流動(dòng)相于同一溶劑瓶中(手動(dòng)預(yù)混合好),充分搖晃溶劑瓶,使兩項(xiàng)混合均勻,采用超聲脫氣20分鐘,如果有變熱的跡象,放置回到室溫。
將流動(dòng)相放于儀器上,打開(kāi)儀器泵,檢測(cè)器,在線脫氣機(jī)等電源,設(shè)置:柱溫:45℃,檢測(cè)器溫度:40℃,流速:1mL/min,打開(kāi)RID檢測(cè)器參比池,沖洗30min以后,將示差檢測(cè)器的循環(huán)按鈕打開(kāi),使得流出液從的RECYCLE管路流出(回流管液體流出去20min后),再將回流管放置于流動(dòng)相瓶子中,進(jìn)行流動(dòng)相循環(huán)。
3)循環(huán)一晚上以后,第二天將流動(dòng)相循環(huán)切換至waste流路,關(guān)閉參比池,沖洗樣品池30min以后,基線平穩(wěn),進(jìn)樣檢測(cè)。
4)如果1mg/mL濃度乳糖還是沒(méi)有出峰,配置一個(gè)濃度為5mg/mL濃度。
注意:晚上循環(huán)時(shí)一定是分析樣品的流動(dòng)相色譜條件設(shè)置。
Welch Xtimate® Sugar-Ca,Sugar-H色譜柱使用維護(hù)注意事項(xiàng)
Xtimate® Sugar-Ca,Sugar-H,填料屬于聚苯乙烯-二乙烯基苯聚合物基質(zhì),磺化強(qiáng)陽(yáng)離子交換樹(shù)脂,在使用過(guò)程中首先要避免的情況是流動(dòng)相試劑污染色譜柱,特別避免使用純有機(jī)溶劑沖洗造成色譜柱填料出現(xiàn)溶脹,改變填料性質(zhì)造成色譜柱分離效果失去。
Sugar-Ca針對(duì)藥典測(cè)定甘露醇和山梨醇,也可以用測(cè)定碳水化合物,各種單糖或聚合糖測(cè)定,流動(dòng)相系統(tǒng)和樣品溶劑基本采用純水體系。
Sugar-H針對(duì)藥典中利巴韋林測(cè)定,也可以用于測(cè)定碳水化合物或有機(jī)酸類物質(zhì)分離,所用流動(dòng)相是硫酸水溶液pH為2.5左右。使用完后基本上采用流動(dòng)相低溫4度封存,在封存過(guò)程中時(shí)間過(guò)久也會(huì)有所長(zhǎng)菌,故封存一段時(shí)間(2~3)周最好換新流動(dòng)相封存,若長(zhǎng)期不使用可以在流動(dòng)相中加入5%乙醇做改善試劑,避免長(zhǎng)菌現(xiàn)象。
當(dāng)主峰峰形有所變化,柱效有所降低時(shí),需要進(jìn)行再生;
Sugar-Ca保護(hù)柱的再生方法與Sugar-Ca分析柱方法一致,根據(jù)相關(guān)的樣品純度有不同的變化,越是天然物(尤其是含有那些重金屬和過(guò)渡金屬元素或是有機(jī)酸的樣品),越需要經(jīng)常地對(duì)柱子進(jìn)行再生,因?yàn)樗鼈儠?huì)與柱子發(fā)生置換??梢酝ㄟ^(guò)注射蔗糖來(lái)測(cè)試柱子的置換情況。如果蔗糖的峰有拖尾,那么柱子需要做以下處理: 配制500mL的再生溶液(Ca EDTA 500mg/L Cas:23411-34-9),把柱子流路方向反過(guò)來(lái),在85℃以 0.5mL/min的流速?zèng)_洗一整夜。再生之后回到正常方向使用。
Sugar-H柱子的再生方法根據(jù)相關(guān)的樣品純度有不同的變化,越是天然物,(尤其是含有那些重金屬和過(guò)渡金屬元素或是有機(jī)酸的樣品),越需要經(jīng)常地對(duì)柱子進(jìn)行再生,因?yàn)樗鼈儠?huì)與柱子發(fā)生置換。如果主峰有拖尾,那么柱子需要做以下處理: 配制 500mL的再生溶液(pH2.5的稀硫酸),把保護(hù)柱和分析柱作為整體將流路方向反過(guò)來(lái),在85℃以 0.5mL/min的流速?zèng)_洗一整夜。再生之后回到正常方向使用,當(dāng)柱子反沖時(shí)很重要的一點(diǎn)是需要保持溶劑的溫度從而確保正確的沖洗,用冷的溶劑將會(huì)延緩沖洗的過(guò)程。